1樓：長春北方化工灌裝裝置股份****
主要成分是：nacl,tris-hcl（ph=8）,edta（ph=8）,sds.nacl,tris-hcl主要是調節溶液的ph,維持一定的離子濃度.
edta主要是二價金屬離子的螯合劑,使影響dna的dna酶中的鈣離子和鎂離子和edta結合,使酶失去活性,有利於提取完整dna；sds主要是和蛋白質結合,使其變形沉澱,從而利於dna的提取,減少和清除帶白質雜質!
基因組dna的提取緩衝液的成分有哪些
2樓：北京索萊寶科技****
提取dna緩衝液（ctab法）:2% ctab(w/v),100 mmol/l tris-hci ph 8.0,20 mmol/l edta ph 8.
0,1.4 mol·l-1 nacl,2% pvp (滅菌後加入2% pvp ,使之充分溶解）.在研磨葉片前加入1%（v/v）ß-巰基乙醇.
在儲存或抽取dna過程中，一般採用什麼緩衝液？
3樓：北京索萊寶科技****
在基因操作實驗中，選擇緩衝液的主要原則是考慮dna的穩定性及緩衝液成分不產生干擾作用。磷酸鹽緩衝系統（pka=7.2）和硼酸系統(pka=9.
24)等雖然也都符合細胞內環境的生理範圍,可作dna的儲存液,但在轉化實驗時,磷酸根離子的種類及數量將與ca2+產生ca3(po4)2沉 澱;在dna反應時,不同的酶對輔助因子的種類及數量要求不同,有的要求高離子濃度,有的則要求低鹽濃度,採用tris-hcl(pka=8.0)的緩衝 系統,由於緩衝液是trish+/tris,不存在金屬離子的干擾作用,故在提取或儲存dna時,大都採用tris-hcl系統,而te緩衝液中的 edta更能穩定dna的活性.
植物基因組dna一般取植物的哪個部分提取最好，是根
4樓：佳尼斯
一般是根，例如水稻和擬南芥，都是研磨提取根部的dna，可以在-80攝氏度下儲存較長時間。根部提取dna可以減少本身rna的汙染。
dna上樣緩衝液和rna上樣緩衝液可以通用麼
5樓：北京索萊寶科技****
dna上樣
緩衝液bai
和rna上樣緩衝液可以du通用。
因為zhidna和rna鏈上的鹼基都基本
dao一致版
。而這兩種上權樣緩衝液中含有的染料是二甲苯青和溴酚藍，都可以與其鹼基結合，跑出條帶。
但是，如果使用dna上樣緩衝液，裡面會夾雜一些rna酶，這些酶有可能會影響到實驗結果。使用前需要將rna酶處理掉。
基因組dna提取中細胞裂解液怎麼配製
6樓：北京索萊寶科技****
裂解方法包括化學裂解、酶裂解和機械裂解.化學裂解和酶裂解通常是比較溫和的方法,通常會很少使dna 斷裂.這兩種方法（包括sds 和溶菌酶處理等）提取純化dna中常用的方法.
機械裂解可以更均一的裂解細胞,同化學裂解相比,機械處理具有更高的裂解效率和更低的選擇性.機械處理可以更劇烈和全面的裂解細胞,但也會造成dna 的斷裂.
一、機械裂解法主要有以下兩中：
1．熱休克（thermal shock）,既反覆凍溶法,是一種常用的機械裂解方式比,通常由冷凍和解凍兩部分組成（freezing and thawing）,.原理：由於細胞內冰粒形成和剩餘細胞液的鹽濃度增高引起溶脹,使細胞結構破碎.
冷凍通常在液氮或-20°c冰上進行,解凍可以在37、50、65 或100℃水浴中進熱休克比化學裂解溫和,但是很有效,有資料表明用熱休克和溶菌酶與sds的方法獲得了90%的細胞裂解率.
2．超聲波處理（ultrasonication）既利用超聲加熱的方法,把細胞破碎.但這種處理會導致dna 的斷裂,所以加熱不宜過劇烈,要設定好超聲時間和間隙時間,一般超聲時間不超過5秒,間隙時間最好大於超聲時間,這些都有利於保護酶的活性.bead-beating 也是常用的機械處理方式,有報道指出bead-beating 比熱休克和化學裂解的細胞裂解效果更好 雖然dna產量較高,但通常得到的dn**段較小.
二、 化學裂解和酶裂解法（在提核酸時聯合使用）
主要是裂解液處理法,細胞裂解液的主要目的有以下幾種：（1）利用去汙劑破壞脂質雙分子層,破裂細胞；（2）溶解蛋白；（3）蛋白變性使其穩定；（4）抑制蛋白酶活性.
主要根據不同的目的,裂解液的組成有所不同,主要有提取核酸和蛋白兩中.在提取rna或dna時,我們主要是要充**解細胞,得到更多的核酸；如果我們的目的是蛋白,那要根據蛋白的位置、特性等因素考慮裂解液,在提取蛋白後,再根據實驗需要復性蛋白等.以下是細胞裂解中常用試劑和其作用：
50 mm tris-hcl ph 7.4（緩衝體系）,150 mm nacl（等滲體系）,1 mm pmsf （強大的蛋白酶抑制劑）,1 mm edta（變性劑和穩定劑）,5 μg/ml aprotinin（蛋白酶抑制劑）,5 μg/ml leupeptin（蛋白酶抑制劑）,1% triton x-100（破壞細胞）,1% sodium deoxycholate（中度變性劑和蛋白溶解劑）,0.1% sds（強變性劑和蛋白溶解劑）.
7m 尿素,2m硫脲(可以提高膜蛋白的融解）,蛋白酶k等.
7樓：青舸飛弦
有專門賣的細胞裂解液，需要新增蛋白酶抑制劑
提取基因組dna的方法有哪些？各有何優缺點？
8樓：
1、苯酚氯仿抽提法
優點是採用了實驗室常見的試劑和藥品，做起來成本比較低廉。
缺點是由於使用了苯酚、氯仿等試劑，毒性較大，長時間操作對人員健康有較大影響，而且核酸的**率較低，損失量較大，由於操作體系大，不同實驗人員操作重複性差，不利於保護rna，很難進行微量化的操作。
2、離心柱法
離心柱法dna提取它的優點是比傳統的酚氯法提取的純度高，有利於rna保護，而且能進行微量操作，以其低廉的**和相對便捷的操作，漸逐取代了傳統dna提取方法，被高校科研所等市場普遍接受。
離心柱法dna提取的缺點是需要較多的樣本，耗材多，對於珍稀樣本無能為力，特別是在法醫、考古等領域顯得力不從心。
同時離心柱法dna提取需要反覆離心，不便於高通量、自動化操作，與現代生物學實驗的高通量、自動化要求格格不入，特別是在基因診斷、疾病檢測、轉基因檢測等領域，離心柱法dna提取需要大量的操作人員及儀器裝置。
當面對突發疫情時，更是需要有高通量的dna提取裝置與方法才能更有效準確的監測疫情、控制疫情。
3、磁珠法
磁珠法是奈米科技與生物技術的完美結合，具有其他dna提取方法無法比擬的優勢，主要體現在：
（1）能夠實現自動化、高通量操作，配合96孔的核酸自動提取儀，在以往做一個樣品的提取時間內可同時實現對96個樣品的處理，效率直接提高96倍，滿足了當前生物學高通量操作的要求，使得在大規模疫情爆發時能夠進行快速篩查原因，這個優點是其他方法難以趕超的。
（2）操作簡單、用時短，整個提取流程只有裂解、結合、洗滌、洗脫四步短時間內即可完成。
（3）安全無毒，不使用傳統方法中的苯、氯仿等有毒試劑，對實驗操作人員的傷害少，保護了實驗人員的身體健康。
（4）磁珠與核酸的特異性結合使得提取的核酸純度高、濃度大。
（5）靈敏度高，適合法醫樣本等痕量dna提取。
9樓：北京索萊寶科技****
dna提取主要是ctab方法，其他的方法還有物理方式如玻璃珠法、超聲波法、研磨法、凍融法。化學方式如異硫氰酸胍法、鹼裂解法。生物方式：
酶法。根據核酸分離純化方式的不同有；矽質材料、陰離子交換樹脂等。
10樓：昊鑫生物
提取基因組dna和細胞核dna是不同的方法提取細胞核要先把細胞破碎分離出細胞核,要在甘油或其他保護劑中進行sds十二烷基磺酸鈉：可破壞細胞膜、核膜,並使組織蛋白與dna分離catb是一種抽提液,破壞細胞膜的~具體忘了~dna不溶於異丙醇,異丙醇可以析出dna,產生白色絮狀沉澱,用槍頭挑出就可以了
當然現在都按不同需求購買試劑盒了。
在提取基因組dna的時候還有哪些雜質，如何除去
11樓：北京索萊寶科技****
蛋白質 用蛋白酶k消化蛋白質,sds（20%）蛋白質變性用氯仿抽提後可以去除蛋白質
多糖類物質 用氯仿抽提可以去除
rna 用rna降解酶可以去除
12樓：匿名使用者
有專門的血清dna提取試劑盒，提取方法簡便，效率高。
全基因組DNA跑膠拖尾，全基因組DNA跑膠拖尾
如果連maker都沒有跑開，那就應該是膠的問題了。先把膠做好了再跑試試看 1 的瓊脂糖凝膠跑dna應該是可以的我感覺可能 1 膠放置的時間不夠 還沒有完全凝固 因此跑的亂2.做膠的時候瓊脂糖是否已經完全溶解了再倒的板子？這兩個可能性最大 100bp的marker上面的條帶沒有跑開，我想這是跑的時間不...
基因組學的簡介，什麼是基因組？什麼是基因組學
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上樣量太大了 其他感覺比較正常 跑的質粒？求教 基因組dna電泳條帶問題 提取的dna在電泳過程 現嚴重的拖尾是什麼原因 你跑的是質粒還是基因組dna？一般緩衝液不太髒的情況下不會出現這種情況，除非你抽的dna發生降解，你多少電壓跑的？有雜質，或是斷的太很 dna降解的可能性較大 1 pcr產物自身...